创建时间:2024-10-04

线粒体疾病的基因检测:英国最佳实践指南

摘要

原发性线粒体疾病是一组以氧化磷酸化受损为特征的神经代谢紊乱疾病。对于该疾病的诊断具有挑战性;已知有350多个核基因和线粒体DNA(mtDNA)编码基因会导致线粒体疾病,产生所有可能的遗传模式,并且由于线粒体基因组多拷贝的异质性而进一步复杂化。以高通量测序技术为主的技术的进步推动了线粒体疾病诊断实践的转变,即从“优先活检”转向血液和/或尿液的全基因组DNA分析。这就需要为参与线粒体基因检测的实验室提供一个参考框架,以确保其能够提供高质量的服务。在英国,由国民保健服务(NHS)高度专业化服务的临床科学家工作组起草了共识指南,并经过全国实验室的讨论。这些指南总结了当前推荐的针对可疑线粒体疾病患者的mtDNA和核编码基因分析的技术和方法。其中包括遗传检测策略用于诊断、家族检测及产前诊断等生殖选择方面的内容。本指南重点包括为最常见的转诊原因提出最低水平mtDNA检测建议,以及适当转诊的指导意见和在分析核线粒体基因时最低适宜基因含量的信息。最后,我们还讨论了变异解释和结果报告的建议,特别侧重于解释和报告线粒体DNA变异所面临的挑战。

本指南重点包括为最常见的转诊原因提出最低水平mtDNA检测建议,以及适当转诊的指导意见和在分析核线粒体基因时最低适宜基因含量的信息。最后,本指南对mtDNA变异解释和报告结果的建议进行了讨论,着重关注解释和报告线粒体DNA变异所面临的挑战。

一、介绍

原发性线粒体疾病是以氧化磷酸化受损为特征的多样化的神经代谢紊乱。线粒体疾病在临床上表现为异质性,影响单个或多个器官系统,可能出现在任何年龄,并与显著的发病率和死亡率相关。据估计,成人中线粒体疾病的患病率约为每 100,000 人中 12.5 例,儿童中的患病率约为每 100,000 人中 4.7 例。然而,在普通人群中,致病性mtDNA变异的频率估计要更高,大约有每250名健康个体中有1人携带低水平的致病性mtDNA变异。

线粒体是存在于所有有核人类细胞中的双膜细胞器,其主要功能是通过氧化磷酸化(OXPHOS)生成三磷酸腺苷(ATP),但他们在包括信号传导途径和细胞凋亡在内的其他细胞过程中也至关重要。细胞内存在多个线粒体,通常在需要能量的细胞中数量较多。人类线粒体DNA (Human mitochondrial DNA, mtDNA)是一个环状基因组,由16,569对碱基对组成,包含一个调控mtDNA复制和转录的非编码D环区、13个编码OXPHOS亚基的蛋白质编码基因以及mtDNA 编码蛋白质转录和翻译所需的 22 个 tRNA 基因和 2 个 rRNA 基因。OXPHOS 过程以及线粒体基因组的维持、复制和转录所需的大多数线粒体蛋白都是由核基因编码的,目前估计线粒体蛋白质组总共包含 1136 个线粒体蛋白。

mtDNA是一个多拷贝基因组,在所有拷贝中都可以出现变异(同质性),或者在同一个细胞中可能存在多个mtDNA基因型(异质性)。由于细胞分裂过程中线粒体的随机分离,具有特定变异的 mtDNA 的比例可能会随着时间的推移在同一个体的组织之间或同一组织内发生变化,这一遗传过程由于在雌性生殖系胚胎发育期间发生的线粒体遗传瓶颈而变得复杂,并可导致在一代人内mtDNA变异水平的快速变化。当mtDNA突变的比例超过给定组织中的临界阈值(阈值效应)时,与异质致病变异相关的临床表现通常变得明显,而这个阈值因不同的mtDNA变异而异。

线粒体疾病可能是由核基因组或线粒体基因组的缺陷引起的,因此与所有可能的遗传模式有关:母系遗传、常染色体显性遗传、常染色体隐性遗传、X连锁和新生的变异。原发性mtDNA致病变异包括单核苷酸变异(SNVs)和基因组重排,最常见的是单个大规模缺失。导致 mtDNA 耗竭的多重 mtDNA 缺失和 mtDNA 拷贝数减少都可能继发于原发性核基因缺陷。检测适当的组织以进行准确的基因诊断至关重要,因为一些致病变异随着年龄的增长在血液中逐渐下降(如MT-TL1 m.3243A>G (NC_012920.1))和其他可能局限于骨骼肌(如MT-TP m.15975T>C, m.16002T>C, m.15998A>T (NC_012920.1)和大规模mtDNA缺失)。

除了遗传咨询和获得生殖选择外,准确的基因检测和确定基因诊断对患者及其家属非常重要,可以提供有关预后和治疗的信息。有必要发布线粒体疾病基因检测指南,以帮助欧洲和国际线粒体诊断界实现一致的高质量服务。这些建议代表了由三个高度专业化的英国国家卫生服务(NHS)实验室整理的共识参考框架,这些实验室密切合作,为整个国家提供诊断检测。这种在三个中心之间分享经验和专门知识的独特合作方式促进了对诊断实践的全面审查和分析。对结果进行总结形成了最佳实践指南。本指南强调线粒体疾病实验室诊断的基本方面、诊断测试策略、线粒体DNA和核遗传变异的家庭测试和生殖选择,以及讨论检测方法、解释和报告。

二、方法

本文件所概述的建议是采用逐步的方法达成的: 来自英国 NHS 罕见线粒体疾病高度专业服务的临床科学家工作组修订并更新了 2008 年整理的现有英国指南,同时考虑到英国线粒体基因组学和基因组测试的最新发展;随后,指南在英国范围内的实验室进行了咨询讨论,并通过了临床基因组科学协会 (ACGS) 的批准。随后,该初稿经过一些修改后被浓缩出版,以供国际读者使用。

三、转诊原因及基因检测策略

由于临床和遗传的异质性以及有限的基因型-表型相关性,线粒体疾病的诊断具有挑战性。因此,有效的基因诊断往往需要多学科的方法。新一代测序技术(NGS)的出现推动了诊断实践的转变,从“活检优先”的方法(使用患者肌肉活检的一线生化和组织化学研究来指导后续分子分析)转向全基因组策略,可以使用血液DNA来加速许多病例的诊断,特别是那些与核基因缺陷相关的病例。与有针对性的常见致病性 mtDNA 变异测试相比,通过 NGS 对整个线粒体基因组进行系统分析提高了灵敏度,并有助于准确的异质性评估,但需要注意的是,更全面的检测也增加了检测不确定意义的变异的可能性。

遗传检测算法取决于转诊的原因、收到的样本类型和实验室服务安排。以下段落概述了先证者的诊断测试、已知家族致病遗传变异时的家庭测试以及在有线粒体疾病家族史的夫妇的生殖选择背景下进行的测试的策略。

一例疑似线粒体病先证者的分子检测

对疑似线粒体疾病患者进行基因检测有两种主要替代方法/策略:(1)对 “常见”mtDNA 变异进行有针对性的检测和/或有针对性的核基因检测,然后在需要和资源允许的情况下进行更全面的检测;(2)线粒体基因组和/或核基因的NGS,如全外显子组测序(whole exome sequencing, WES)或全基因组测序(whole genome sequencing, WGS)。

血液DNA的一线靶向检测适用于常规转诊(临床上没有迫切需要获得诊断的情况)、高度提示特定变异或基因的临床表现(例如,MELAS、MERRF、LHON、Pearson综合征、POLG 相关疾病)和/或资源有限的情况。对于血液中未检测到致病性变异的患者,可能会建议提供额外的临床信息和样本(例如尿液)或肌肉活检以进行生化和组织病理学研究。进一步的基因检测可以根据对剩余线粒体疾病的怀疑程度逐步进行。

此外,可以采用基于NGS的综合检测来进行敏感且高效的一线基因检测。这种方法可以适用于所有转诊适应症,但特别适合更复杂的表型和/或紧急转诊。由于mtDNA疾病和核线粒体疾病都占儿童期和成人期线粒体疾病的很大比例,如果可能,建议同时检测mtDNA和核DNA。然而,如果需要采取顺序性方法以降低成本,那么通常最适合先进行mtDNA检测,因为相较于大型核基因组测序(Panels式NGS,WES 或 WGS),全线粒体基因组NGS成本更低,周转时间也更短。对于紧急的儿科转诊,如果可以获得父母-子女三人的样本,那么无基因偏见的全外显子测序(WES)或全基因组测序(WGS)是一个适当的检测策略。这种方法在分析数据时,不使用基因面板或对与某种病症相关的变异位点有预设概念。尽管全基因组测序通常包括对整个线粒体基因组的深度测序(并进行适当的生物信息学分析),但无基因偏见的三人全外显子测序可能需要额外的全线粒体DNA的下一代测序,以可靠地以足够的敏感性筛查线粒体基因组。尽管有研究表明,来自全外显子测序的非目标读取可能就足够了(“基因测试方法和策略”部分有进一步讨论)。对于线粒体疾病是几种可能的鉴别诊断之一的转诊情况,无基因偏见的三人全基因组/全外显子测序也可能适用。

如图所示为疑似线粒体疾病患者转诊推荐的分子遗传检测算法流程(图1)。尽管全球各地的遗传检测途径可能会有一些差异,但在英国,我们提供的算法具有广泛适用性,并且与针对成年发病线粒体疾病的国际途径保持一致。

图1  线粒体疾病患者基因检测策略概述

上图:已采集血样。策略1是一种更有针对性的方法,可能适用于常规转诊或并行测试存在障碍的情况。策略2允许采用更迅速、更彻底但更昂贵的检测策略,并且适用于常规和临床紧急病例,如危重儿科患者。当采用策略2时,如果资源允许,建议同时检测mtDNA和核DNA;如果需要顺序检测,mtDNA检测可以优先进行,因为降低了成本和周转时间。

下图:接受肌肉活检。由于肌肉活检不再广泛应用于一线诊断,如果血液DNA的基因分析不能确定病因或不确定,该途径通常适用。

  • 对疑似线粒体疾病先证者进行mtDNA 检测

致病性 mtDNA 变异可以是影响蛋白质编码或线粒体 tRNA 变异的 SNV 或小插入/缺失突变,也可以是大规模 mtDNA 重排,例如“常见”的 4977 bp mtDNA 缺失,尽管这些变异的大小可能高度可变。

由于向“基因组学优先”的诊断方法过渡,mtDNA检测通常在诊断途径的早期通过血液和/或尿液DNA分析进行,如算法所示(图1)。然而,值得注意的是,肌肉仍然是检测一些mtDNA变异(如MT-TP m.15975T>C)和大规模mtDNA重排的首选样本类型;因此,如果血液/尿液分析不能确定基因诊断,可能需要肌肉活检。

随着 NGS 成本持续下降以及生物信息学流程变得越来越高效和复杂,mtDNA 测试越来越多地转向通过 mtDNA NGS、WES 或 WGS 进行一线全 mtDNA 测序。如上所述,WES 和 WGS 捕获可以同时分析核基因和mtDNA 基因。尽管如此,针对常见 mtDNA 变异和大规模 mtDNA 重排的针对性测试仍然是适当且具有成本效益的。表1提供了对最常见的诊断转诊原因适用的最低级别的有针对性mtDNA检测建议,以及可能需要更广泛检测的指导。

关于最常见诊断转诊原因的线粒体DNA测试的最低推荐水平的指南。

如果所有样本类型都可用,'>'用于表示组织类型偏好的顺序;事实上,血液通常首先作为最容易获得的目标DNA来源进行测试。

  • 对疑似线粒体疾病的先证者进行核基因检测

已知超过 300 个核编码基因中的致病变异可引起线粒体疾病,并可能与常染色体显性、常染色体隐性、X 连锁或新发遗传模式相关。核基因编码对线粒体结构和功能至关重要的蛋白质。其中包括呼吸链酶复合物的结构亚基、组装因子和辅助因子,以及 mtDNA 翻译机制的蛋白质、mtDNA 维护、线粒体输入通道以及线粒体裂变和融合等。根据临床指征,检测可以是基于单基因(当一个特定的基因型导致了特定的表型时),或者更常见的基于基因面板的NGS、WES或WGS。当采用基因面板分析时,可能适合分析其它对临床相似但非线粒体的鉴别诊断的基因面板(例如,其他的代谢疾病、白质脑病或心肌病);在一些群体中,非线粒体的诊断甚至可能超过线粒体的诊断。无基因偏见的WGS/WES也被越来越多地采用,在可能的情况下建议进行父母-子女三联体分析(三联体分析为变异解释提供有价值的数据)。这可以作为第一线测试(例如,在紧急儿科转诊中),或者作为其他具有明显临床怀疑线粒体疾病的患者的附加测试,在基于基因面板的测试未能确定诊断的情况下。

表2总结了核相关线粒体疾病,并为单基因检测(包括单基因内常见致病性变异筛查)和基因面板检测的适当转诊提供指导;该表还包括有关基因面板的最小适当基因内容的信息。

对疑似原发性线粒体疾病患者进行常规诊断转诊的单核基因和基因Panels检测,包括关于适当转诊的指导和基因Panels中最低适当基因含量的信息。

AR常染色体隐性遗传,AD常染色体显性遗传,PEO进行性外眼肌麻痹。

a PanelApp: https://nhsgms-panelapp.genomicsengland.co.uk/和https://panelapp.genomicsengland.co.uk/panels/。PanelApp“绿色”基因来自截至 2022 年 11 月 5 日的 NHS 基因组医学服务签署的面板资源(这些是所有基因面板的 1.2 版本,除了综合线粒体疾病核基因面板的版本 1.17,在 PanelApp 上被称为“可能的线粒体疾病 - 核基因”)。实验室可能希望在这些组中包含其他基因,例如具有中等/有限的基因与疾病关联证据的“琥珀”基因,以及基于已知生物功能但迄今为止尚未报告疾病关联的候选基因。随着基因与疾病关联的新证据的确定,核基因组的内容需要定期更新。用户可以参考PanelApp网站获取更新以及用于英国诊断用途的最新签署版本的基因内容。

b    单等位基因显性SDHx变异与癌症易感性相关(嗜铬细胞瘤和副神经节瘤),并进行了综述。目前在OMIM中与线粒体相关疾病相关的复杂II相关基因包括SDHA、SDHD和SDHAF1。

c    无基因偏见的WES或WGS是一种适当的替代检测策略(如果可用),特别是对于需要紧急转诊的儿科病例(这些病例可以获得来自父母-子女三人组的样本)和/或对于那些线粒体疾病是几种可能的鉴别诊断之一的转诊病例。

d    这些基因也在与丙酮酸脱氢酶无关的途径中发挥作用。

当相关疾病常见、具有特征表型的可治疗疾病、存在共同的起始人的变异和/或生化证据表明特定基因存在缺陷时,特定的单基因测试仍然是一种有价值的简单而快速的一线测试。

  • POLG相关疾病是最常见的遗传性线粒体疾病之一。首先,可能会优先筛查在欧洲人群中常见的POLG基因中的四个常染色体隐性致病变异/等位基因:c.1399G>A p.(Ala467Thr)、c.1760C>T p.(Pro587Leu)与c.752C>T p.(Thr251Ile)顺式、c.2243G>C p.(Trp748Ser)、以及c.2542G>A p.(Gly848Ser) (NM_002693.3)。编码胸苷磷酸化酶(TP)的TYMP的双等位基因致病变异导致线粒体神经胃肠脑肌病(MNGIE)。生化结果,即血浆胸苷和脱氧尿苷水平升高和/或 TP 酶活性降低,可能表明 TYMP 存在缺陷。

  • SLC19A3的双等位基因致病变异导致硫胺素代谢障碍综合征-2(THMD2),也称为生物反应迟钝性基底节病(BBGD)。早期给予大剂量生物素可导致临床改善。

  • 常染色体隐性遗传tmem70相关复合体V缺陷,也称为线粒体复合体V (ATP合酶)缺陷核型2 (MC5DN2),在吉卜赛人群中常见。在这个群体中已经描述了一个初始致病变异,如果合适,可以进行初步筛选(c.317-2A>G NM_017866.6)。

对核基因的分析可以通过使用下一代测序技术对多基因面板进行全面检查。这些Panels中包含的基因是根据相关的临床表型进行整理的。在英国,PanelApp 为基因检测(包括线粒体疾病)的核基因面板的管理提供了宝贵的资源。这些面板会根据当前文献和诊断与研究实验室的数据进行定期审查和更新。如上所述,由于与非线粒体疾病存在临床重叠,如果进行WES或WGS,同时分析其他基因Panels可能是适当的。

对于核线粒体疾病,核基因组可细分如下:

  • 综合线粒体疾病核基因Panels,包括所有已知的与孟德尔遗传线粒体疾病相关的核基因;随着从“首选活检”到“首选基因组学“的范式转变,这个面板现在已经成为对于有强烈线粒体疾病临床怀疑(并且疑似有核基因缺陷)的患者最相关的检测。

  • 针对特定酶缺陷,有线粒体DNA(mtDNA)维持缺陷的证据,或者特定表型的情况,进行针对性的核基因Panels检测:

  • OXPHOS复合物、组装因子和辅助蛋白,即即用于复合物I、II、III、IV和V缺乏症的基因Panels。

  • mtDNA维持障碍,由于一组多样性的核基因在mtDNA的多个方面(包括复制,核苷酸库的维持,以及线粒体的融合和分裂)中发挥作用;这些基因中的致病变异导致mtDNA合成缺陷,从而造成多个删除和/或耗竭的累积,最终影响氧化磷酸化能量产生。

  • 肝脏表型,尤其适用于怀疑/可能患有线粒体肝病的急性肝功能衰竭婴儿。

  • 丙酮酸脱氢酶(PDH)缺乏,由编码PDH核心亚基或编码参与辅助因子的调节或生物合成的蛋白质的基因缺陷导致。


四、家庭检测

在对线粒体疾病进行遗传诊断后,建议先证者(及其家人)转诊至临床遗传学诊所或专业线粒体服务机构,以进行适当的遗传咨询和家庭随访。复发风险和其他家庭成员的风险取决于诊断是由核编码基因还是mtDNA 变异引起。

在核基因诊断为线粒体疾病的家庭中,咨询和进一步的家庭检测与特定基因的遗传方式有关(常染色体显性遗传、常染色体隐性遗传或x连锁)。

在mtDNA相关诊断的家庭中,遗传可能是新生遗传或母系遗传,并且男性患者没有将mtDNA变异传递给后代的风险。

对16岁以下无症状且有mtDNA相关线粒体疾病家族史的无症状儿童进行检测尤其具有挑战性,英国的常规做法是不对这些儿童进行检测。5 岁以上的儿童可以进行超声心动图等临床检查,以确保没有心肌病的证据。可以提供持续的心脏监测,这应该在个案的基础上加以考虑。建议实验室在检测前尽可能与专科医生或临床遗传学家讨论无症状儿童基因检测的转诊。

下面详细介绍了 mtDNA 变异家族风险的其他考虑因素。

  • mtDNA单核苷酸变异(SNVs)和重复

这些可能通过母系遗传。遗传给其他家庭成员的风险取决于先证者母亲的遗传状况。如果她具有致病性mtDNA变异的异质性突变,那么她的所有母系亲属可能也有面临携带这种变异的风险。先证者母亲体内的变异水平会影响她出现症状的风险以及传染给她可能拥有的任何其他后代的风险,尽管由于线粒体瓶颈,这是不可预测的。在同一家庭内观察到的临床变异可能是由于兄弟姐妹和其他母系家族成员[33]之间的突变负荷和组织分布差异。对于具有致病性mtDNA变异的同质性的女性,她们所有的后代都将有可能继承该变异。同质变异(如LHOH相关的致病变异和MT-TI m.4300A>G)也可以观察到不同的外显率和临床变异性。

  • 单个mtDNA缺失

这些通常是偶发的(新生),因此在没有任何家族史的情况下,先证者的兄弟姐妹复发的风险被认为很低。据估计,患有 mtDNA 缺失的临床受影响女性有二十四分之一的风险将该缺失遗传给后代[34]。

  • 对大家庭成员的检测

母系亲属可能有遗传家族mtDNA致病性变异的风险,因此可以酌情提供检测。理想情况下,应该首先对近亲进行级联测试,以便了解对更远的亲属的风险。

生殖选择和相关的基因检测

  • 核变异的生殖选择和产前诊断

对于因核基因缺陷而已知有线粒体疾病家族史的夫妇,其生殖选择和遗传咨询与其他孟德尔病症类似。对于常染色体隐性遗传疾病,建议在提供产前诊断 (PND) 之前确认父母携带者状态。PND 可以通过绒毛膜绒毛取样(CVS,通常在妊娠 11-12 周)或通常在妊娠后期(妊娠 15-17 周)通过羊膜穿刺术提供。CVS或羊膜穿刺术的检测可以通过桑格测序或其他有针对性的方法对直接提取或培养的细胞进行。重要的是,还必须对所检测的胎儿 DNA 进行母体细胞污染 (MCC) 检测,以排除可能影响结果解释的严重污染。此类测试的指导方针已在其他地方提出。胚胎植入前遗传学诊断也可在专业实验室进行,通常遵循授权和批准这类检测的国家指南。

  • mtDNA变异的生殖选择和产前诊断

由于mtDNA严格的母系遗传,携带致病性mtDNA变异的男性患者可以放心,他们不会有将该变异遗传给后代的风险。由于卵子发生和疾病风险预测过程中mtDNA瓶颈的影响导致线粒体DNA变异传播的复杂性,女性患者的遗传咨询通常具有挑战性。可用的生殖选择也可能根据所涉及的致病变异种类和变异水平而有所不同。建议由临床遗传学诊所或专门的线粒体服务机构提供咨询,对所有可用的生殖选择进行评估。此外,建议尽可能在女性生育期早期开始此类咨询,因为随着年龄的增长和卵巢储备功能的下降,选择可能会变得有限。欧洲神经肌肉中心(ENMC)国际研讨会在制定线粒体疾病生殖选择管理指南方面发挥了重要作用,希望进一步探讨这一问题的人可能对此感兴趣。

在寻求产前诊断时,评估具有异质致病性mtDNA变异的妇女的疾病传播风险,应包括评估至少两种不同组织(如血液、尿液、口腔)的变异水平,并在可能的情况下检测其他母体亲属和任何受影响的后代。这种测试最好提前提供。

新生的致病性mtDNA突变已被报道;然而,然而,重要的是要考虑到该变异可能低于所测试的母体组织中的检测水平,并且不能排除母体生殖系嵌合体的可能性(即在母亲的生殖细胞中出现的基因突变,而这种突变并未出现在母亲的其他体细胞中)。

  • 通过 CVS 或羊膜穿刺术进行产前诊断

预防线粒体 DNA 疾病的产前检测是一种生殖选择,这对于一些有将mtDNA 致病性变异传播给后代的风险的女性来说是可行的。产前检测以预防线粒体DNA疾病是一种生殖选择,对一些有可能将线粒体DNA致病性变异遗传给后代的女性来说是可行的。对许多常见mtDNA变异的研究表明,大约在妊娠10周后,变异水平在发育中的胎儿中保持稳定;因此,产前样本可以估计所生孩子患线粒体疾病的风险。

至关重要的是,mtDNA 变异的产前检测应仅在直接 CVS/羊水细胞上进行,而不是在培养的细胞上进行,因为 mtDNA 变异的水平在培养过程中可能会发生变化。最近的出版物报道了在少数病例中,可能存在CVS 异质性和产后检测结果以及同一妊娠的胎盘样本之间存在高度差异;这些结果可以在提供 CVS 的背景下考虑,但是,根据我们的长期经验(未发表的研究结果),我们没有遇到 CVS 异质性水平和产前结果之间存在任何显著差异。

异质mtDNA变异:产前诊断可以为某些异质mtDNA变异体提供信息。预测突变水平的风险可能很困难,特别是在突变水平与疾病严重程度之间的相关性很复杂的情况下。对于MT-TL1 m.3243A>G致病变异,已经开发了一个模型,可以根据母体m.3243A>G 水平预测低于指定阈值的可能结果。对于具有独特分离模式的其他变体(如MT-ATP6 m.8993T>G p.(Leu156Arg)),对于大多数突变水平的可信预测是有可能的。在母体 DNA 中存在高水平变异的情况下,产前诊断通常是不合适的。然而,也有一些例外。当在高突变负载的女性的卵母细胞中观察到明显的突变水平偏态分布时,产前诊断可能是有用的。对于明显的新生mtDNA变异,如果需要保证,可以进行产前诊断。

此外,据报道,具有致病性 mtDNA 变异家族史且血液中检测不到突变水平的女性受孕发病的风险较低。对于这些女性来说,产前诊断仍然可以让她们放心,因为家族线粒体 DNA 变异可能低于血液中的检测水平,或者可能仅限于生殖系中。

同质mtDNA变异:对于任何同质型变异,通常都不适合进行产前诊断(请参阅“线粒体捐赠(线粒体替代疗法[MRT])”部分)。对于与氨基糖苷类诱导的耳毒性和非综合征感觉神经性耳聋相关的MT-RNR1 m.1555A>G变异的产前诊断,被认为是不适当的,因为这种同质型变异并未与严重的神经表型相关联,而且可以在出生后进行检测。这可能作为一个护理点的检测,以便提供定制化的抗生素处方指导。

单一、大规模的mtDNA缺失:单次、大规模的mtDNA缺失通常是零星的,因此复发的风险很低。在一项研究中,对226个家庭进行了风险评估,其中在先证者中检测到了单一mtDNA缺失。临床上未发病的女性极不可能生育超过一个发病的孩子,而临床上发病的女性则有1/24的风险生育发病的孩子。如果需要,可以进行产前诊断以获得安心。

  • 胚胎植入前遗传学诊断

mtDNA 变异的 PGD 涉及对致病性 mtDNA 变异的水平进行量化,以便根据突变水平和质量选择最合适的胚胎进行移植。PGD主要在卵裂期胚胎的单个卵裂球上进行,活检细胞中的突变水平表明胚胎内的突变负载水平。关于囊胚期的替代方法的数据有限,有一份报告显示活检结果与出生后结果不一致。胎儿的变异水平需要低于严重疾病表达的临界阈值,并且预测成年后不太可能出现临床症状的突变阈值具有挑战性。目前,已提出了≤18%的阈值。然而,确切的阈值需要根据具体情况来考虑,因为它可能是可变的,这取决于所涉及的家族mtDNA变异、先前的家族传播、家庭成员之间的临床表现,以及提供PGD服务中心的当地政策和程序。因此,PGD应该只在专门的中心提供,在这些中心可以对每个家庭的阈值进行全面的调查。此外,由于PGD是一种降低风险的程序,它可能只对那些可能产生低突变卵母细胞的妇女有益,这进一步强调了需要专业的生殖咨询。PGD不适用于具有高突变水平变异的女性(与明显分离模式相关的变异如MT-ATP6 m.8993T>G/C或m.9176T>C/G变异有关的病例除外)。

  • 线粒体捐赠(线粒体替代疗法[MRT])

线粒体捐赠是一种基于体外受精的技术。在已将这项技术合法化的国家/司法管辖区(例如英国),当其他生殖选择都不可行时(例如,在高突变负荷下的同质变异和/或异质变异),其可以提供给那些具有致病性mtDNA变异的妇女。目前使用的两种技术,母体纺锤体转移(MST)和原核转移(PNT)技术都已有综述发表。该干预措施的使用须遵守国家立法和准则。有关该程序的可用性和适用性的更多信息应向患者当地的临床遗传学服务机构寻求。

六、基因检测方法和方法

  • 线粒体DNA检测

样品类型的考虑。在某些转诊类别中检测到变异的可能性取决于样本类型和/或患者的年龄。因此,在确定最合适的样本类型时,这两种情况都需要考虑。表1给出了不同变异的首选样本类型的详细信息,尽管通常首选血液样本(作为最容易获得的目标 DNA 来源,并且通常可以进行诊断)从而避免需要侵入性样本(例如肌肉活检)。

一般而言,重要的是考虑以下几点:

  • 随年龄增长,血液中MT-TL1 m.3243A>G等变异体水平下降;据报道,m.3243A>G在血液DNA中的比例以每年约1%的速度下降,因此可能无法在症状较轻的老年患者中检测到。根据我们的经验,年龄超过 40 岁、症状较轻(例如糖尿病和耳聋)的患者,血液 DNA 中通常存在 1-5% 的异质性,根据所使用的检测方法,可能会漏掉这种异质性。

  • mtDNA 重排也会在快速分裂的细胞(如淋巴细胞)中被选择和丢失,因此不太可能在20岁以上成年人的血液中检测到。NGS方法提高了检测血液中mtDNA重排的敏感性;然而,目前尚不清楚这是否能够可靠地检测成人血液中的mtDNA缺失/重排,还需要进一步的研究。

  • 与血液相比,尿液是一个更合适的组织来源,而且比肌肉的侵袭性更小。尤其是对MT-TL1 m.3243A>G检测,因为尿液中的水平与肌肉中的水平更密切相关,并且随着时间的推移保持稳定。尽管根据我们的经验,DNA的质量和数量是高度多变的,而且下游分析的失败率高于血液或肌肉的失败率,但对于大多数应用来说,推荐 20 ml 清晨样本就足够了。此外,在尿液中也可以检测到单个缺失。然而,应该注意的是,如果结果为阴性并且临床仍存在强烈怀疑,则应建议转诊进行肌肉活检。

  • 肌肉是一种有丝分裂后且常受临床影响的组织,因此通常是mtDNA分析的最佳组织。此外,肌肉活检对组织学、组织化学和呼吸链酶研究非常有用,有助于线粒体或其他疾病的诊断。然而,由于其侵入性和昂贵的性质,肌肉活检不再是常规的一线检查。正如下面的变异解释部分所讨论的,肌肉活检对于意义不确定的变异(mtDNA和细胞核DNA)的功能评估可能是重要的(例如mtDNA维持障碍)。此外,还需要跟踪在其他组织中检测到的低水平的(可能的)致病性变异,这些组织对患者症状的临床意义可能不确定。肌肉活检应在异戊烷中快速冷冻,并在干冰上运送到测试实验室。

  • 肝脏活组织检查也应在异戊烷中快速冷冻,并在干冰上运送到检测实验室。它们为肝病患者的 mtDNA 耗竭分析提供了合适的组织。肝脏活检中类似的考虑也适用于肌肉活检,尽管活检程序更具侵入性且风险更高。

常见mtDNA单核苷酸变

目前有多种方法可用于检测常见 mtDNA 变异,当实验室考虑选择检测方法时,应考虑以下几点:

  • 灵敏度和特异性:分别无假阴性和假阳性;理想的检测方法应该具有较高的敏感性和特异性。

  • 检测限制:为了检测异质性变异,理想的检测方法应该能够检测到至少10%的水平,尽管这可能会因变异、样本类型和转诊原因而变化。例如,在检测成人血液 DNA 中的 MT-TL1 m.3243A>G 或对其他异质变体进行家族检测时,与筛选与 LHON 相关的常见变体(通常是同质体)所需的水平相比,需要较低的检测下限。

  • 定量:这对于确定变异的准确水平是更可取的。

  • 稳健性: 所选方法应故障率低且可重复。

不同的分析方法可以满足上述一些或所有标准。这些包括:

  • 焦磷酸测序

  • 实时PCR

  • 高通量测序(NGS)

  • 数字PCR/液滴数字PCR

  • 荧光限制性消化PCR结合毛细管电泳

  • 限制性消化PCR结合琼脂糖凝胶电泳

  • Sanger测序

请注意,限制性消化PCR结合琼脂糖凝胶电泳和桑格测序方法都具有相对较高的检测下限,并且可能存在产生假阴性结果的风险。此外,这两种方法都无法准确量化变异水平。可以使用替代方法来确认检测到的变异,以排除假阳性结果。常见的多态性可能会干扰分析并导致假阳性或假阴性结果。例如,当通过限制性消化 PCR (RFLP) 分析测试 MT-ATP6 m.8993T>G/C变体时,MT-ATP6 m.8994G>A 多态性的存在可能会导致假阴性结果。因此,如果使用此测定法,还应进行多态性测试,如果检测到,则应进行 MT-ATP6 m.8993T>G/C 的替代分析。此外,核编码线粒体DNA片段(NUMTs)的共扩增可能会导致假阳性结果,特别是如果引物没有设计为避开已知的NUMTs,就可能导致低水平的异质型变异。

检测mtDNA重排

上述要点也适用于mtDNA重排的检测。当检测肌肉来源的DNA时,所采用的方法应该能够检测多个mtDNA 缺失和单个mtDNA 重排。检测的限度应考虑到血液中的单一重排可能以较低水平存在,即使在儿童中也是如此。同样,在线粒体DNA维持障碍的患者中,肌肉中多种线粒体DNA缺失水平可能较低。长链PCR是一种简单、快速的方法,广泛应用于mtDNA常规重排检测中,然而,该方法无法进行异质性定量和重排断点确定。确定mtDNA重排断点和重排水平可能对临床预后有帮助,或者如果临床表型不典型,定量可能有助于解释。

有多种方法可供选择,包括:

  • 长链PCR:引物的选择至关重要,它们应能检测到大部分的线粒体DNA重排(即,扩增出大部分的主要弧)。

  • Southern印迹法:用于mtDNA重排(包括缺失、重复和缺失二聚体)的定量和表征。

  • 实时PCR/定量PCR:可能有助于mtDNA重排的定量分析。

  • NGS/WGS: 可能有助于确定断点和可能量化线粒体DNA的重排(如果使用无PCR的文库制备方法);还有可能提高检测低水平的敏感性。

mtDNA耗竭检测

MtDNA耗竭分析是一种定量测试,用于评估疑似 mtDNA 耗竭综合征 (MDS) 患者受临床影响的有丝分裂后组织(例如肌肉或肝脏)中的 mtDNA 拷贝数。由于核基因测试(确定mtDNA缺失综合征的主要遗传原因)的可用性增加,以及肌肉活检在诊断早期的频率降低,mtDNA拷贝数分析现在主要在从核基因测试中未获得确切诊断的情况下进行,即如果没有识别出遗传原因,或者如果检测到变异的未确定显性。

对于每种组织类型,必须使用来自正常对照样本的数据来确定正常mtDNA拷贝数变异的范围。此外,可能需要从正常对照中得到一个与年龄匹配的参考范围,因为有证据显示mtDNA拷贝数会随着年龄的变化而变化。目前,用于常规转诊的最常用方法涉及相对于核DNA的实时PCR定量。其他方法包括滴液数字PCR,Southern印迹法,NGS/WGS。

在肌肉或肝脏中检测到的mtDNA拷贝数减少的证据应与临床、组织学和呼吸链酶的发现一起解释,并且不能明确证实 mtDNA 耗竭综合征的诊断。特别是,这可能是由于采样问题和/或其他非线粒体疾病继发的线粒体 DNA 耗竭。

全线粒体基因组测序分析

与Sanger测序相比,高通量测序更受青睐,因为它具有更大的可扩展性,更具成本效益,并且在检测下限(如果读取深度较高)和准确的异质性定量方面提供了更高的灵敏度。例如,在读数深度为500的情况下,根据二项分布计算,预计7.5%的杂合性变异将有99%的概率在≥5%的序列读数中被检测到。实验室必须遵循其他相关的最佳实践指南,其中包括Sanger测序和NGS方法。根据当地的验证和报告政策,NGS鉴定的可报告变异可能需要通过其他方法进行确认。随着测序技术的不断发展,未来有望利用新兴的NGS/第三代测序平台等替代方法进行全线粒体基因组测序。

除了靶向 NGS 方法外,还可利用 WES 或 WGS 对整个线粒体基因组进行测序。从 WES 或 WGS 获取诊断级数据(即足够的灵敏度和准确的异质性定量)取决于线粒体基因组的读取深度。WES的MtDNA序列数据来源于离靶读数,并且根据所使用的外显子组测序试剂盒而高度可变。因此,为了进行诊断性线粒体基因组测序,需要由测试实验室进行适当的验证。由于NUMTs可能导致假阳性变异调用的可能性,通常建议通过替代方法对mtDNA变异进行确认。这些方法可能包括Sanger测序或其他经过验证的技术,以确保结果的准确性。

  • 核编码基因的检测

对于适当的样本类型没有限制。由于肌肉和尿液 DNA 的数量通常有限,且应优先用于 mtDNA 分析,因此实验室可能需要索取血液样本进行核基因检测。由于核致病变异遵循所有遗传方式,所采用的筛查技术应能以高敏感性和特异性检测到这些变异,并注明任何限制。对核编码的线粒体疾病基因中的致病性变异的筛查可以通过Sanger测序进行单个基因的筛查,或通过NGS进行基因组的筛查(如在“转诊原因和基因检测策略-核基因组”部分详细描述)。一般来说,Sanger测序涉及对基因编码外显子以及内含子/外显子边界的筛查;然而,对于在这些区域之外有已知反复出现的致病变异的基因,筛查应进行扩展(例如,存在已知的深度内含子变异)。对于在某些人群中可能常见的反复出现的致病变异的基因,可以作为一线测试进行有针对性的分析(例如,Sanger测序或焦磷酸测序)。这在POLG筛查中表现得最为明显,在全基因测序之前,可能优先分析四个在欧洲人群中常见的常染色体隐性病原性变异/等位基因(见“疑似线粒体疾病的先证者的核基因检测”部分)。当临床指标需要同时分析多个核基因时,通常使用NGS。关于选择相关基因进行面板设计的详细信息,请参见“转诊原因和基因检测策略—核基因面板”部分。随着NGS在近年来在诊断遗传实验室中变得越来越主流,文库制备可能会使用WES或WGS,然后对感兴趣的基因进行有针对性的分析。如果未找到分子诊断,这还给予了应用其他基因组或定期数据重新分析的优势。另外,还可以使用针对性的捕获方法。覆盖Sanger测序和NGS方法验证的最佳实践指南包含在这2篇文献中。

值得注意的是,Sanger测序不会检测到涉及一个或多个外显子的缺失或重复,虽然如果它们反复无法进行PCR扩增,可以怀疑存在同源缺失。检测这些大规模重排需要拷贝数分析,这通常是通过MLPA(多重连接依赖的探针扩增)或基于NGS数据分析的方法(例如,MPV17和POLG的部分缺失)进行的。

七、变异解释

核变异解释和致病性分类应遵循美国医学遗传学和基因组学学院和分子病理学协会 (ACMG/AMP)提出的最新指南,以及临床基因组资源 (ClinGen) 的相关规范。

临床基因组科学协会 (ACGS) 也制定了这些指南,提供澄清和代码强度修改,并定期进行审查。最新版本的指南可以在 ACGS 网站的质量部分找到[79]。建议实验室在其报告中说明他们使用哪些指南来解释和分类变异。

mtDNA 变异的致病性分类通常更具挑战性,ClinGen专家小组最近发布了 ACMG/AMP 标准规范和线粒体DNA解释指南。除了这些指南之外,下面还提出了一些简短的要点,以帮助实验室查询 mtDNA 变异的致病性:

  • 使用专用mtDNA数据库:MITOMAP数据库是mtDNA变异最全面的资源(包括良性和致病性变异),并定期更新。所提供的信息包括位点、疾病表型、GenBank频率和相关出版物的链接。

  • 频率:在评估致病性时必须考虑变异频率,并且应针对一般人群进行调查。MITOMAP 数据库中频率≥1/1000 的已审查过的GenBank 序列或 gnomAD v3.1中频率≥1/1000的同质型序列,并且没有任何疾病关联的变异,通常不太可能是致病的。

  • 单倍群: mtDNA单倍群定义了在人类进化过程中累积的mtDNA变异的地理起源。MITOMASTER可以通过MITOMAP网站访问,它提供了在不同单倍群中变异分布的预测,可以在评估变异频率时考虑。

  • 异质性: 大多数病原性mtDNA变异是异质性的。必须准确地确定变异水平,并且必须在被检测组织的背景下解释。临床受影响组织中的变异水平应与临床表现和任何额外的组化和/或生化发现相符。

  • 同质性:从临床未发病的同质性母亲遗传的同质性变异不太可能是致病的。然而,一些已知的致病同质变异具有可变外显率(例如,MTRNR1 m.1555A>G, MT-TI m.4300A>G, MT-ND4 m.11778G>A p.(Arg340His),其他与LHON相关的变异),这必须加以考虑。

  • 进化保守性和功能性: 可以使用在线预测工具,利于不同物种之间氨基酸和核苷酸的保守性来评估蛋白质编码的变异。对mt-tRNA变异来说,应特别考虑其对规范结构和功能的影响。这可以参考mt-tRNA变异的专门数据库。MITOMAP数据库提供的MitoTIP提供了一个在线预测分数,可以用于评估mt-tRNA变异,除此之外还可用其他证据。

  • 与解释核变异相似,mtDNA变异评价应结合并考虑所有相关的家族史和可用的临床和组织病理学发现。实验室可能希望从专业实验室寻求更多关于mtDNA变异解释的建议。

  • 可能仍然需要肌肉和其他组织活检来指导进一步的功能评估,并为确定致病性提供证据(见下文)。

mtDNA 和核 DNA 变异的功能评估对于提供支持或反对致病性的进一步证据非常有帮助。这些研究可能需要肌肉和/或其他组织活检,这可以由专业实验室进行。说明性的例子包括:研究具有组织化学缺陷的mtDNA 变异分离的单纤维研究;肌肉组织学和mtDNA缺失分析,以研究在与成人发病 mtDNA 维持障碍相关的基因中检测到的核变异的致病性;当在PDH缺乏相关基因中发现不确定意义的变异时,进行皮肤活检来测量 PDH 酶活性。

报告变异的分类非常重要,即致病性、可能致病性或不确定的意义。分类为良性或可能良性的变异通常不包含在患者报告中。报告意义不确定的变异可能不合适。这取决于当地实践以及进一步的调查/信息是否有助于解释;进一步的英国指导可从ACGS获得。

八、报告

分子遗传学报告是患者、其家人和转诊临床医生的终生文件。因此,报告中提供的信息必须全面、清晰、简洁,并对所提出的临床问题提供全面的解释和明确的答案,这一点至关重要。除了概述关键限制并说明敏感性和特异性外,报告还应包含分析区域(例如,特定外显子、基因、基因面板)和所使用方法(例如,试剂盒参考和使用的版本(如果适用))的完整详细信息;或者,报告应包括一项声明,表明该信息可从实验室(或通过网站)获得。关于诊断分子遗传学报告的一般考虑的指南已发表,应予以遵守。

变体命名应遵循人类基因组变异学会(HGVS)所述的现行国际准则,而基因命名公约应遵循已批准的HUGO基因命名委员会。任何报告的编码变异都应在核苷酸水平和预测的蛋白质变化的水平上进行描述;这适用于核 DNA 变异和mtDNA 变异。还应提供所使用的参考序列。

在线粒体疾病(核或mtDNA相关)的任何诊断中,建议报告说明任何复发风险以及对其他家庭成员的影响,并建议转诊至临床遗传学诊所或专业线粒体服务机构进行遗传咨询和适当的家庭随访。如果尚未得出诊断(未检测到变异或临床意义不确定且可能需要进一步调查的变异),报告应包含一条评论,要求提供额外的临床信息或其他样本以进行进一步适当的测试(例如肌肉活检);根据所进行的测试的程度,还可能适当地评论进行进一步测试/分析的可能性(例如,对临床重叠的非线粒体疾病的基因组进行分析,或与基因无关的分析)。在报告与癌症易感性相关的单等位基因显性SDHx变异(嗜铬细胞瘤和副神经节瘤)时,还应特别考虑;这种风险应包含在报告中,并建议转诊至临床遗传学诊所。

下面给出了报告 mtDNA 变异的更具体考虑因素:

  • 报告中应注明来源组织(如血液、尿液、口腔、肌肉等)。

  • 线粒体基因组通常参考前缀为“m”的整个线粒体基因组参考序列按顺序编号。当前适用的参考序列是 GenBank NC_012920.1。这是剑桥参考序列的修订版本,通过将 m.3107 处缺少核苷酸指示为“N”,保留了一些历史核苷酸编号(来自原始剑桥参考序列)。

  • 对于可报告的mtDNA变异,如果是异质性或同质性,应尽可能说明变异水平。

  • mtDNA筛选方法的检测限制应包括在内。

  • 结果的解释应考虑患者的年龄和性别、检测样本类型、检测限制和所用方法的敏感性/特异性。在临床发病的患者中检测到的致病和/或可能致病的mtDNA变异,其突变水平与临床表型一致,应报告为证实或符合线粒体疾病的诊断。

  • 如果在检测的组织中检测到一种(可能)致病的异质mtDNA变异,其突变量低于可能引起患者症状的突变量,那么这可能是偶然发现的。检测额外的组织和专家中心的建议可能会有所帮助。如果得出的结论是该变异不能解释表现型,那么由于生殖影响和对家庭成员的风险,报告该变异可能是适当的;然而,应遵循当地关于报告偶然发现的政策。

  • 报告应根据特定致病性/可能致病性mtDNA变异的现有证据,就任何相关的出现(额外)症状风险进行评论。这适用于先证者及其亲属,无论是否临床发病或无症状。对于与组织分离程度不均相关的致病性mtDNA变异,在最初的血液DNA分析完成后,可能需要进一步的样本,以进一步细化风险评估。这样做是为了更全面地了解该变异在不同组织中的分布情况,从而更准确地评估其对个体的影响。此外,对于某些变异(例如,LHON 主要致病变异),大家庭成员的风险因性别和年龄依赖性外显率而变得复杂,报告中应考虑这一点。

  • 对于携带(可能)致病性 mtDNA 变异且处于/或即将达到生育年龄的女性患者,报告应包括一份声明,表明她们有将该变异传播给后代的风险,并且可以从临床遗传学和/或专门的线粒体服务获得生殖建议。此外,在遗传咨询后,可以酌情向其母系亲属提供检测。

  • 对于携带(可能)致病性 mtDNA 变异的男性患者,报告应包含一份声明,表明他们没有将变异传播给后代的风险。然而,母系亲属仍然面临风险,在遗传咨询后可以酌情提供检测。

  • 当没有发现致病性mtDNA变异时,报告应包括一项声明,即该结果降低了潜在mtDNA遗传缺陷的可能性,但不完全排除这种可能性。

  • 对于未检测到变异的家族检测,报告应包括一项声明,表明该结果减少但不完全排除家族变异可能存在于未检测的其他组织中和/或低于所用方法检测限的低水平的可能性。因此,对于未检测到家族变异的女性来说,传播给任何后代的风险会降低,但不能完全排除。

  • 对于产前报告,应根据给定 mtDNA 变异的现有证据(包括家族数据)做出解释和结论。“转诊原因和基因检测策略——生殖选择和相关基因检测”部分提供了更多详细信息,尽管理想情况下这些报告应由专业中心发布。所有产前报告应包括母体细胞污染检测的结果。

九、质量保证

建议实验室按照分子遗传检测质量保证指南遵循已建立的良好实验室规范。此外,实验室应力求通过获得正式认可,证明符合国际公认的标准(如ISO标准15189:2012医学实验室)。鼓励每年参加适当的外部质量评估(EQA)计划,因为它提供独立的熟练程度证据,促进持续的质量保证和能力,并促进教育。此外,在无法参加正式 EQA 计划的地方,可以安排实验室间的样品交换。

十、讨论

由于线粒体和核基因组的双重参与,线粒体疾病包含广泛的临床表型,这通常使临床和分子诊断变得复杂且具有挑战性。mtDNA变体在遗传、异质性和阈值效应方面的独特特征进一步混淆了这一点。这里提出的建议已经通过英国临床基因组科学协会的批准,经过全英实验室的协商,并对同一组的先前指导进行了更新,包括线粒体基因组检测的最近进展。这篇文章的目的是将这些建议呈现给国际科学读者,并强调线粒体疾病的分子诊断的当前基因策略,包括检测、解释和为患者及其家庭报告的各个方面。

参考文献:

[1] European Journal of Human Genetics (2023) 31:148–163; https://doi.org/10.1038/s41431-022-01249-w

译者:安徽医科大学第一临床医学院 郑琦

校对:安徽医科大学第一临床医学院 张宁 高御洲

指导老师:安徽医科大学第一附属医院 纪冬梅

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